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美國藥典USP40〈1223〉對NAT法支原體檢測產(chǎn)品有關(guān)性能驗(yàn)證的要求,包括專屬性、檢測限(LOD)、耐用性、重現(xiàn)性。其中對于專屬性的定義及驗(yàn)證方法如下:定義:替代性定性微生物方法的特異性定義為其檢測特定于該技術(shù)的一系列挑戰(zhàn)微生物的能力?!拔?span style="color:#f5c81c;">生物范圍”可以定義為代 表對患者或產(chǎn)品風(fēng)險(xiǎn)的有限數(shù)量的微生物,在生產(chǎn)環(huán)境和產(chǎn)品故障中發(fā)現(xiàn)的微生物,適合于測量替代方法的有效性的微生物,以及在適合于方法和產(chǎn)品的形態(tài)學(xué)和生理屬性方面具有 代 表性的微生物。證明:特異性是通過藥典和替代方法中微生物的挑戰(zhàn)面板的可比回收率來證明的。微生物挑戰(zhàn)超出了檢測或定量的限度,但達(dá)到了可以衡量方法有效性的水平。南京正揚(yáng)的支原體檢測試劑盒的價(jià)格。合肥支原體檢測方法學(xué)
日本藥典JPXVⅢ〈G3-14-170〉對NAT法支原體檢測產(chǎn)品有關(guān)性能驗(yàn)證的要求,包括檢測限(LOD)、專屬性、耐用性、可比性。其中對于專屬性的描述及要求如下:專屬性是指在樣本中能夠明確檢測到目標(biāo)核酸存在的能力。核酸擴(kuò)增法的專屬性依賴于引物/探針的選擇和測試條件的嚴(yán)謹(jǐn)性(包括擴(kuò)增和檢測步驟)。選擇特異的及對絕大多數(shù)支原體(柔膜體綱,如支原體屬和相關(guān)種屬如解脲支原體,螺原體,無膽甾原體等)保守的序列來設(shè)計(jì)引物/探針是相當(dāng)重要的。核酸擴(kuò)增法檢測支原體種屬的能力應(yīng)該由章節(jié)中所列的參考支原體的實(shí)驗(yàn)結(jié)果來確認(rèn),而不推薦采用引物/探針與數(shù)據(jù)庫比對的方法,(JPXVⅢ提供了用作檢測的建議支原體種類)專屬性。合肥雞毒支原體檢測公司生物制品放行時(shí)支原體檢測的金標(biāo)準(zhǔn)。
我國藥典規(guī)定的支原體檢測方法為培養(yǎng)法和指示細(xì)胞染色法。但這些方法也存在一些不盡人意之處,如所需時(shí)間較長,有的操作復(fù)雜等?!吨袊幍?020年版3301支原體檢測法》中指出:除培養(yǎng)法和DNA染色法外,也可采用經(jīng)國家藥品檢定機(jī)構(gòu)認(rèn)可的其他方法,對支原體進(jìn)行檢測。由于支原體檢測存在必要性,如何盡可能提高檢測的準(zhǔn)確率以及效率尤為關(guān)鍵。不少業(yè)內(nèi)指導(dǎo)原則指出,支原體的核酸法檢測,通過嚴(yán)格且充分的方法學(xué)驗(yàn)證,可以替代藥典中對的培養(yǎng)法與DNA染色法。
常用的支原體檢測方法有傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)法、指示細(xì)胞培養(yǎng)法(DNA染色法)、ELISA法、PCR法等。指示細(xì)胞培養(yǎng)法(DNA染色法)則靈敏度比較低,因背景熒光的存在,細(xì)胞輕度支原體污染不易檢出;細(xì)胞裂解死亡產(chǎn)生碎片也會被熒光染料染色被誤認(rèn)為是支原體染色所致造成假陽性;另外,熒光染色法一般要求培養(yǎng)無污染的指示細(xì)胞作為對照,增加了檢測的工作量。目前,PCR法為主流的支原體檢測手段,PCR法比傳統(tǒng)分離培養(yǎng)法檢測時(shí)間大縮短,且靈敏度高。歐洲藥典對支原體檢測的要求有哪些?
qPCR法支原體檢測的原理:PCR反應(yīng)過程中可通過加入熒光標(biāo)記的特異性探針檢測PCR產(chǎn)物生成的量。帶有一對熒光分子的探針與樣品中DNA通過堿基互補(bǔ)配對的原則進(jìn)行結(jié)合,隨著PCR反應(yīng)的進(jìn)行,Taq聚合酶合成DNA,同時(shí)沿5’-3’方向水解DNA探針,一對熒光分子隨著探針的水解而分開,發(fā)出熒光信號。通過連續(xù)監(jiān)測反應(yīng)體系中熒光讀數(shù)的變化,可即時(shí)反映特異性擴(kuò)增產(chǎn)物量的變化。具備靈敏度高、特異性好、操作簡單、用時(shí)較短等優(yōu)點(diǎn)。日本藥典JPXVⅢ〈G3-14-170〉對NAT法支原體檢測產(chǎn)品有關(guān)性能驗(yàn)證的要求,包括檢測限(LOD)、專屬性、耐用性、可比性。其中對于檢測限的描述及要求如下:檢測限是一個(gè)分析方法對樣本中目標(biāo)核酸能檢測出的蕞低量,但無需準(zhǔn)確定量。在建立分析方法的檢測限時(shí),需要確定核酸擴(kuò)增分析的陽性臨界值。陽性臨界值是95%的測試中能被檢測到的每體積樣本中的目標(biāo)序列拷貝數(shù)。確定陽性臨界值需對表征過的且已校準(zhǔn)(CFU或核酸拷貝數(shù))的支原體參考株或國際標(biāo)準(zhǔn)株做一系列的梯度稀釋,并于不同時(shí)間(日間)進(jìn)行檢測以檢查測試間的差異。qPCR法支原體檢測方法有哪些。鄭州PCR法支原體檢測公司
日本藥典對支原體檢測的要求。合肥支原體檢測方法學(xué)
qPCR法支原體檢測試劑盒的操作流程包括支原體DNA提取、qPCR試劑配制、qPCR加樣及上機(jī)檢測、結(jié)果分析四個(gè)環(huán)節(jié)。支原體DNA提取包含樣品前處理(離心分離上清等)、樣品裂解液消化、支原體DNA與磁珠結(jié)合、一次洗滌、二次洗滌、洗脫;qPCR試劑在配制時(shí)需先將試劑放置于室溫,避光放置30min,直至試劑融化,各個(gè)試劑組分混勻后按照說明書進(jìn)行配制并分裝。在實(shí)驗(yàn)室,注意分區(qū)操作,降低實(shí)驗(yàn)發(fā)生污染的風(fēng)險(xiǎn)。用qPCR法進(jìn)行支原體檢測時(shí),出現(xiàn)擴(kuò)增曲線異常的可能原因是什么?①如出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增現(xiàn)象,該問題是由反應(yīng)管未蓋緊或密閉性差引起溶液蒸發(fā)而造成。上機(jī)前確保管蓋密閉,反應(yīng)結(jié)束后查看八聯(lián)管或96孔板各管液面是否一致。與設(shè)備硬件相關(guān),需咨詢硬件供應(yīng)商解決。②如出現(xiàn)擴(kuò)增曲線不平滑現(xiàn)象:可能與ROX加入量不足相關(guān),個(gè)別設(shè)備有ROX校正功能,不同型號設(shè)備對ROX的需求量會有差異,需設(shè)置實(shí)驗(yàn)摸索合適的ROX加入量。合肥支原體檢測方法學(xué)